蛍光タンパク質発現細胞の固定法

蛍光タンパク質を発現したHeLa細胞を固定・包埋し、ラボの標準サンプルとして使用したいと考えております。
ただ、作成した固定細胞が自家蛍光を発してしまい非常に困っております。何も発現していない細胞でも自家蛍光が出てきます。スペクトルはとっていませんが標準的なCFPフィルタで観察した時に最も気になる感じです。

今までライブ観察ばかりで細胞の固定は行ったことが無く全くの初心者でして、うまく情報も探せずトラブルシュートできずにおります。自家蛍光の少なくなる条件やヒント等なんでも結構ですのでご教示いただけないでしょうか。参考になりそうなHPや本の情報も非常に助かります。

私は以下のとおり行っております。

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・蛍光タンパク質を発現した細胞をPBSで３回洗浄

・細胞をDMEM/F-12培地に置換
　意外でしたがここでPBSに置換すると自家蛍光がさらに大きくなるようでした。３種類ほど試して今の培地にしています。アルデヒドでpHが変わるので固定前の培地はpH緩衝作用が強い方が良い等のコツがあるのでしょうか。

・終濃度3.7%となるように37%ホルムアルデヒド溶液を加えて室温10分放置

・PBSで３回洗浄して観察に使用
　洗浄後にGelvatol包埋してもPBSに浸した状態で観察しても自家蛍光は出るようなので、固定時に自家蛍光が発生していると考えています。
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どうぞよろしくお願いします。